當(dāng)前觀點(diǎn):【賽思基因】熒光素酶生物檢測(cè)技術(shù)的應(yīng)用
賽思基因(www.scientsgene.com),專注遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)的應(yīng)用于開發(fā),致力于打破基因型限制,助力基因編輯育種。
介紹一個(gè)常用的實(shí)驗(yàn)技術(shù)~
(相關(guān)資料圖)
利用熒光素酶與底物結(jié)合發(fā)生化學(xué)發(fā)光反應(yīng)的特點(diǎn),把感興趣的基因轉(zhuǎn)錄的調(diào)控元件克隆在螢火蟲熒光素酶基因(firefly luciferase)的上游,構(gòu)建成熒光素酶報(bào)告質(zhì)粒。然后轉(zhuǎn)化煙草,測(cè)定熒光素酶活性。通過熒光素酶活性的高低判斷性刺前后或不同刺激對(duì)感興趣的調(diào)控元件的影響。為了減少內(nèi)在的變化因素對(duì)實(shí)驗(yàn)準(zhǔn)確性的影響,將帶有海腎熒光素酶基因(Rinilla luciferase)的質(zhì)粒作為對(duì)照質(zhì)粒與報(bào)告基因質(zhì)粒共轉(zhuǎn)化,提供轉(zhuǎn)錄活力的內(nèi)對(duì)照,使測(cè)試結(jié)果不受實(shí)驗(yàn)條件變化的干擾。
技術(shù)背景
1
熒光素酶生物檢測(cè)技術(shù)誕生于1990年,已有30年的發(fā)展史。單熒光素酶檢測(cè)系統(tǒng)到雙熒光素酶檢測(cè)系統(tǒng)的發(fā)展,為科研人員提供了更為嚴(yán)謹(jǐn)?shù)膶?shí)驗(yàn)手段。雙熒光素酶報(bào)告基因檢測(cè)系統(tǒng)在原有的基礎(chǔ)上引入了海腎報(bào)告基因,可以排除不同組之間細(xì)胞生長(zhǎng)狀況、細(xì)胞數(shù)目以及轉(zhuǎn)染效率帶來的干擾,起到校正的作用,從而使實(shí)驗(yàn)結(jié)果更為可靠。
什么是雙熒光素酶?
2
雙熒光素酶通常是指螢火蟲熒光素酶和海腎熒光素。其中熒火蟲熒光素是從螢火蟲中分離得到,分子量為61 kDa;而海腎(Renilla)熒光素酶則是從海腎(Renilla reniformis)中分離,分子量為36 kDa。
兩種熒光素酶的區(qū)別是什么?
3
①底物和輔因子不同:螢火蟲熒光素酶需要熒光素、氧氣、ATP和鎂離子同時(shí)存在才能發(fā)光;而海腎熒光素酶僅需要腔腸素(coelenterazine)和氧氣。
②發(fā)光的顏色不同:螢火蟲熒光素酶產(chǎn)生的光顏色呈現(xiàn)黃綠色,波長(zhǎng)550-570nm;而海腎熒光素酶產(chǎn)生藍(lán)光,波長(zhǎng)480nm。正是由于這兩種酶的底物和發(fā)光顏色不同,所以在雙熒光素酶報(bào)告實(shí)驗(yàn)中得到廣泛應(yīng)用,它們的發(fā)光原理如下所示:
實(shí)驗(yàn)原理
4
Firefly luciferase和Renilla luciferase之所以被稱為報(bào)告基因,是因?yàn)樵诨虮磉_(dá)調(diào)控研究時(shí),利用兩者表達(dá)產(chǎn)生的熒光比值可以監(jiān)控、證實(shí)微觀層面上的分子間的相互作用。具體做法是:將靶基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件或5’啟動(dòng)子區(qū)克隆在Firefly luciferase基因的上游,或把3’-UTR區(qū)或lncRNA結(jié)合序列克隆在Firefly luciferase基因的下游,以研究啟動(dòng)子的強(qiáng)弱和轉(zhuǎn)錄因子對(duì)啟動(dòng)子的作用或miRNA對(duì)目的基因或lncRNA的調(diào)控作用(見圖2)。與此同時(shí),引入包含Renilla luciferase基因的TK載體作為內(nèi)參,以便消除細(xì)胞轉(zhuǎn)染等因素帶來的組間誤差。
Dual Luciferase Reporter實(shí)驗(yàn)步驟
5
以煙草為材料進(jìn)行Dual Luciferase Reporter的實(shí)驗(yàn)步驟:
1)構(gòu)建相應(yīng)的載體。
2)挑取轉(zhuǎn)化有重組質(zhì)粒的農(nóng)桿菌單菌落,接種到2 mL LB液體培養(yǎng)基(添加相應(yīng)抗生素)中,28℃ 220 rpm培養(yǎng)過夜。
3)農(nóng)桿菌培養(yǎng)至OD600為1.0,1700× g離心5 min收集菌體后,用1/2MS液體培養(yǎng)基清洗菌體2次;用含有150 μmol/L乙酰丁香酮的1/2MS液體培養(yǎng)基將農(nóng)桿菌的OD600調(diào)至1.0。
4)將待檢測(cè)的農(nóng)桿菌菌液進(jìn)行混合,使每種菌液的OD600為0.5。
5)選取生長(zhǎng)期為1個(gè)月左右完全伸展的煙草葉片,將混合好的菌液用1 mL注射器(去掉針頭)從煙草葉背面進(jìn)行注射。為保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的一致性,需要將對(duì)照載體和待檢測(cè)目標(biāo)載體的菌液注射在同一葉片的不同部位上, 以保證相同的生長(zhǎng)背景。
6)正常溫室生長(zhǎng)條件下,24-48 h即可取樣觀察。
7)取3-4片直徑為6-8 mm的葉盤,放入2 mL的EP管(提前放入3-4個(gè)小鋼珠)中,液氮中冷凍,使用破碎儀進(jìn)行研磨破碎(45 Hz,30 s)。破碎完全后在EP管中加入100 μL裂解液。
8)冰上孵育5 min左右,充分裂解葉片。
9)10000-16000 rpm離心1 min,取上清。
10)熒光檢測(cè):
①取20 μL裂解液,加至培養(yǎng)板中。按照實(shí)驗(yàn)需要,可設(shè)置3孔-5孔重復(fù)。
②配制螢火蟲螢光素酶反應(yīng)工作液和海腎螢光素酶反應(yīng)液,即螢火蟲螢光素酶底物(50 ×)和海腎螢光素酶底物(50×)。
分別用對(duì)應(yīng)的緩沖液稀釋至1×工作液。并孵育至室溫。
③加入100 μL螢火蟲螢光素酶反應(yīng)液,震板混勻,檢測(cè)螢火蟲螢光素酶的活力,檢測(cè)盡量在30 min內(nèi)完成。
④加入100 μL海腎螢光素酶反應(yīng)液,震板混勻,檢測(cè)海腎螢光素酶的活力,檢測(cè)盡量在30 min內(nèi)完成。
熒光素酶報(bào)告基因的特點(diǎn)
6
1、優(yōu)越的靈敏度,比Western bloting靈敏度高1000倍以上;
2、內(nèi)源性低,無內(nèi)源性表達(dá);
3、熒光素酶檢測(cè)不受細(xì)胞內(nèi)其他物質(zhì)影響;
4、發(fā)光檢測(cè),檢測(cè)方便;
5、靈敏度高,1020摩爾熒光素酶分子;
6、檢測(cè)范圍廣,大于7個(gè)數(shù)量級(jí)。
主要應(yīng)用領(lǐng)域
7
1、潛在啟動(dòng)子/啟動(dòng)子核心區(qū)域檢測(cè);
2、潛在增強(qiáng)子/抑制子等調(diào)控子核心元件檢測(cè);
3、啟動(dòng)子區(qū)可能的轉(zhuǎn)錄因子結(jié)合位點(diǎn)檢測(cè);
4、啟動(dòng)子/增強(qiáng)子與轉(zhuǎn)錄因子的相互作用;
5、病毒/細(xì)胞相互作用;
6、物理化學(xué)等誘導(dǎo)因素對(duì)啟動(dòng)子活性的調(diào)節(jié)(抑制或增強(qiáng));
參考文獻(xiàn)
8
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